Disección de un osteícteo (trucha)

Observando la parte exterior del pez pudimos ver:

1.     Aleta pectoral:
2.                Aletas dorsales
   

   3.        Pínulas
   4.       Aleta caudal
   5.       Opérculos
   6.       Aleta pélvica
   7.       Aleta anal
   8.       Pedúnculo caudal
   9.       Línea lateral
   
   
   
   
   Para poder ver el interior realizamos un corte en la parte posterior del pez en forma rectangular. A continuación empezamos a sacar los distintos órganos del interior del pez:
   
   
   
   Realizado por :
   Lucia Batalla Nistal
   María Ortega Goizueta
   Ana Muñiz Fernández
   
   

Equilibrio Químico

Práctica de equilibrio químico

El objetivo de esta práctica es estudiar la evolución de un equilibrio químico cuando se varía la concentración de algunas de las sustancias intervinientes.
 Preparamos 4 tubos de ensayo con una disolución inicial de FeCl3 y KSCN (formada tomando 1 ml de disolució de KSCN 0,1 M con 1 ml de disoclución de FeCl3 0,1 M y diluyendo hasta 50 ml) y en cada uno de ellos echamos diferentes compuestos para comprobar lo que ocurría al desplazarse el equilibrio:

 Tubo control: Se deja inalterado como control
 Tubo 1: Se le añade gota a gota una disolución de KSCN
 Tubo 2: Se le añade gota a gota una disolución de NaOH
 Tubo 3:  Se le añade gota a gota una disolución de NaI
 Tubo 4:  Dejamos un segundo tubo control

La reacción a comprobar era la siguiente:

En el tubo 1 con KSCN comprobamos que el equilibrio se desplazaba hacia la derecha y la disolución pasó a un color más rojizo.

En el tubo 2 con NaOH comprobamos que se formaba un precipitado de hierro en el fondo. En este mismo tubo añadimos unas gotas de HCl, con lo que el color de la disolución debía ser otra vez igual que al principio. En la primera imagen se ve la disolución de FeCl3 y NaOH con el precipitado. En la segunda comprobamos que volvía a su color original comparándolo con el tubo control.

  

 

En el tubo 3 con NaI comprobamos que el equilibrio se desplazaba hacia la izquierda y la disolución se ponía de un color más amarillento aunque era un reacción más lenta y no se notaba tanto la diferencia.

Paula Sanchez Urbina y Paula Gonzalo Costales

¡ATACANDO COBRE CON ÁCIDO NÍTRICO!

Hoy 13 de febrero hemos estado trabajando en una práctica muy interesante. Pues hemos conseguido quitar el cobre presente en el recubrimiento de las monedas de uno, dos y cinco céntimos mediante la aplicación de unas pocas gotas de ácido nítrico.

Lo primero que hicimos fue introducir unas cuantas monedas en tres matraces erlenmeyer y echar el ácido nítrico en cada matraz tapando rápidamente con un tapón para que no se escapasen los óxidos de nitrógeno (NO y NO2)

Echo esto, el primer matraz lo metimos en hielo para observar lo que ocurría y resulta que tendía a ser incoloro, mientras que el que metimos en agua caliente pasó ligeramente a un color parduzco mas intenso justo al meterlo, como podemos ver en el siguiente vídeo.

Esta práctica nos ha parecido muy interesante pues nos hemos dado cuenta de lo que puede hacer el ácido nítrico con una simple moneda, lo que nos ha ayudado a ver que debemos extremar mucho la precaución cuando usemos este tipo de sustancias.

María Vidal Aspiroz.

Fecundación de erizo de mar

El objetivo de esta práctica consistía en crear un embrión tras la fecundación artificial de los gametos de dos erizos.
Primero realizamos un pinchazo e inyectamos 1 ml de la disolución de KCl 0,5 M en agua de mar.
Posteriormente colocamos el orizo de forma que la cara oral quedase hacia arriba y al cabo de un rato empezó a salir un líquido blanquecino (si los gametos son de macho) o rojizo (si son de hembra). Siendo esta la única forma de conocer el sexo del orizo porque estos no presentan ningún dimorfismo sexual ni ningún aparato visible para reconocerlos.
Colocamos la muestra en el portaobjetos y observamos en el microscopio un ligero movimiento.
Luego mezclamos los óvulos y los espermatozoides, pero esta vez no conseguimos apreciar ningún indicio de fecundación.

Autor: Carlos Mayoral García

Erizos de Mar

Hace dos semanas hicimos el primer intento de la práctica de la fecundación de los erizos de mar.

Antes de realizar la actividad nos informamos sobre cómo extraer óvulos y espermatozoides de los susodichos equinodermos. Una vez informados, empezamos con la práctica realizando los siguientes procedimiento:

1. Inyectar a través de la membrana oral (peristoma, zona oral) 1 ml de 0,5 M de KCl en agua de mar    
2. Colocar el espécimen sobre un recipiente de vidrio que contiene unos ml de agua salina sobre la cara aboral, lado puesto a la zona oral.
3. Pocos minutos después aparece un líquido espeso en la cara aboral, donde se localizan los gonoporos. Si el líquido es blanquecino se trata de esperma, mientras que si es rojizo corresponde a óvulos (no existe forma alguna de distinguir los sexos por caracteres externos) .
4. Observar al microscopio en vidrios de reloj el aspecto y movimiento de óvulos y espermatozoides recién eyaculados y después de diluir con agua (1:10). Los espermatozoides sólo adquieren movilidad después de contactar con el agua salina.

Al final, el primer intento de esta práctica no tuvo buenos resultados. Esperamos que en el siguiente intento consigamos tener éxito.  

     Cecilia Arbesú, Lucía Batalla y Sara Canellada.

Extracción de ADN

Hace unas semanas, hemos realizado la práctica de extracción de ADN. A partir de esta experiencia, realizando determinados procedimientos conseguimos observar las fibras de cromatina de distintos alimentos, como el plátano, hígado...

PROCEDIMIENTO

1. Triturar la muestra (medio hígado de pollo, guisantes…) en un mortero. Añadir

arena para que al triturar se puedan romper las membranas de y queden los

núcleos sueltos. (Otra opción sería utilizar una batidora)

2. Añadir al triturado, 50 centímetros cúbicos de agua. Remover hasta hacer una

especie de papilla o puré.

3. Filtrar para separar los restos de tejidos que hayan quedado por romper.

4. Medir el volumen del filtrado con una probeta.

5. Añadir al filtrado un volumen igual de cloruro sódico 2M. Con esto conseguimos

producir el estallido de los núcleos para que queden libres las fibras de

cromatina.

6. A continuación se añade 1 centímetro cúbico de SDS o detergente. La acción de

este detergente es formar un complejo con las proteínas y separarlas del ADN.

Así nos quedará el ADN libre de las proteínas que tiene asociadas.

7. Añadir mediante una pipeta 50 centímetros cúbicos de alcohol. Hay que hacerlo

lentamente, de forma que el alcohol resbale por las paredes del vaso y se

formen dos capas. En la interfase, precipita el ADN.

8. Introducir una varilla de vidrio e ir removiendo siempre en la misma dirección.

En la figura se indican las capas. Sobre la varilla se van adhiriendo unas fibras

blancas, visibles a simple vista, que son el resultado de la agrupación de

muchas fibras de ADN.

Creemos que esta práctica ha sido muy interesante puesto que hemos aplicado nuestros conocimientos sobre Biología. La fotografía de la parte superior esta realizada con plátano y la inferior con hígado, en ellas se pueden observar las fibras de cromatina resultantes al aplicar los procedimientos indicados.

Paula Sánchez Urbina

Cecilia Arbesú Saracho

Autores: Carlos Mayoral y David Plaza
Observación cloroplastos de elodea.